2025-12-17
Cette expérience fait référence à "GB 31658.22-2022 National Food Safety Standard — Determination of β-Agonist Residues in Animal-Derived Foods by Liquid Chromatography-Tandem Mass Spectrometry" and utilizes the Wayeal LCMS-TQ9200 liquid chromatography-tandem mass spectrometry system to determine the content of β-agonists in porkLes résultats expérimentaux indiquent que l'essai d'adéquation du système a démontré des sommets bien formés et une bonne linéarité, répondant aux exigences expérimentales.La répétabilité du temps de rétention pour la solution de travail standard β-agoniste était inférieure à 1%.Pour la solution d'essai de sensibilité des β-agonistes, les rapports signal/bruit des pics principaux à des concentrations de 0.2 ng/ ml et 0,5 ng/ ml étaient significativement supérieurs à 3 et 10 respectivement, répondant aux exigences expérimentales.
Aucun β-agoniste n'a été détecté dans l'essai de l'échantillon de viande de porc..
Les mots clés:Chromatographie liquide-spectrométrie de masse en tandem; β-agonistes; Clenbutérol; Sécurité alimentaire.
1Instruments et réactifs
1.1 Liste de configuration du LCMS
Tableau 1 Liste des configurations des instruments
| Je ne veux pas. | Modulaire | Quantité utilisée |
| 1 | Le système LCMS-TQ9200 | 1 |
| 2 | P3600B Pompes binaires à haute pression constante | 1 |
| 3 | CT3600 Fourneau à colonne | 1 |
| 4 | AS3600 Autosampleur | 1 |
| 5 | Station de travail de chromatographie SmartLab CDS 2.0 | 1 |
1.2 Réactifs et normes
Tableau 2 Liste des réactifs et normes
| Je ne veux pas. | Réactif/norme | La pureté |
| 1 | Méthanol | Grade LC-MS |
| 2 | Éthanol | Grade LC-MS |
| 3 | Acide formique | Grade LC-MS |
| 4 | Acétate d'ammonium | Grade analytique |
| 5 | β-glucuronidase/arylsulfatase | 30 U/60 U/mL |
| 6 | Acide chlorhydrique | 70% |
| 7 | Acétate d'éthyle | Grade analytique |
| 8 | Éther de méthyle tert-butyle | Grade analytique |
| 9 | Solution d'ammoniac | Grade analytique |
| 10 | Le clenbutérol standard | 98% |
| 11 | Clenbutérol-D9 standard | 98% |
| 12 | Norme de la ractopamine | 98% |
| 13 | Ractopamine-D6 est une norme | 98% |
| 14 | Cimaterol standard | 98% |
| 15 | Le salbutamol standard | 98% |
| 16 | Le salbutamol-D3 standard | 98% |
| 17 | Norme de la terbutaline | 98% |
| 18 | Terbutaline-D9 standard | 98% |
| 19 | Tulobutérol classique | 98% |
| 20 | Cimbutérol classique |
98% |
1.3 Matériel expérimental et équipement auxiliaire
Nettoyeur à ultrasons
Mélangeur de vortex
Bains d'eau à température constante
Centrifugeuse à grande vitesse
2. Méthode expérimentale
2.1 Pré-traitement des échantillons
2.1.1 Hydrolyse et extraction enzymatiques
Pesez 2 g de l'échantillon (avec une précision de ± 0,05 g) dans un tube centrifugeur de 50 ml. Ajoutez 6 ml de solution tampon d'acétate d'ammonium de 0,2 mol/l et 40 μl de β-glucuronidase/arylsulfatase.et incubé à 37°C dans le noir, en agitant dans un bain d'eau pendant 16 heuresLaisser refroidir à température ambiante pour une utilisation ultérieure.
2.1.2 Extraction, purification et concentration
Prenez la solution préparée, ajoutez 100 μl de la solution de travail interne standard de 100 ng/ml, tourbillonnez pour mélanger à fond et centrifugez à 8000 r/min pendant 8 minutes.1 mol/l de solution d'acide chlorhydriqueAprès centrifugation à 8000 r/min pendant 8 minutes, ajuster le pH du surnaturant à 10 ± 0.5 à l'aide d'une solution d'hydroxyde de sodium de 10 mol/l. Ajouter 15 ml d'acétate d'éthyle, agiter à vitesse moyenne pendant 5 minutes, centrifuger à 5000 r/min pendant 5 minutes. Ramasser la couche organique supérieure.ajouter 10 ml d'éther tert-butylméthyle, agiter à vitesse moyenne pendant 5 minutes, centrifuger à 5000 r/min pendant 5 minutes, ramasser la couche organique supérieure, combiner toutes les couches organiques et évaporer jusqu'à séchage sous un flux d'azote à 50°C.Dissoudre le résidu dans 5 ml de solution à 2% d'acide formique et mettre de côtéPréparer une colonne d'extraction en phase solide à échange de cations en mode mixte en l'activant séquentiellement avec 3 ml de méthanol et 3 ml d'acide formique à 2%.rincer séquentiellement avec 3 ml d'acide formique à 2% et 3 ml de méthanolÉluer la colonne avec 3 ml de 5% de solution de méthanol ammoniacée. Evaporer l'éluat jusqu'à ce qu'il soit sec sous un flux d'azote à 50 °C. Ré-dissoudre le résidu dans 0,5 ml de méthanol.Solution à 1% d'acide formique (10:90, v/v), mélanger soigneusement et filtrer à travers une membrane microporeuse de 0,22 μm pour analyse par chromatographie liquide-spectrométrie de masse en tandem.
2.2 Conditions d'expérimentation
2.2.1 Conditions de chromatographie liquide
Colonne de chromatographie C18, 1,8 μm 2.1*100 mm
Phase mobile: A: acide formique à 0,1% dans l'eau; B: méthanol
Débit: 0,3 ml/min
Température de la colonne: 40°C
Volume d'injection: 3 μl
3Test d'adéquation du système
L'essai d'adéquation du système montre que les pics cibles sont bien formés sans interférence d'autres pics d'impuretés, répondant aux exigences expérimentales.
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Figure 1 Chromatogramme de sept β-agonistes testés (1 ng/mL)
3.2 Portée linéaire
En prenant des solutions standard de β-agonistes et en utilisant des solutions de travail à concentration intermédiaire, une courbe standard a été préparée par étapes.avec R2 > 0.99, indiquant une bonne relation linéaire.
Tableau 3 Tableau des plages linéaires pour les β-agonistes
| Le composé. | Plage linéaire | équation de régression | Coefficient de corrélation linéaire (R2) |
| Clenbutérol | 00,5-50 ng/mL | y est égal à 0,121x-0.1024 | 0.9973 |
| Ractopamine | 00,5-50 ng/mL | y = 0,7188x-0. Nous avons donc un autre facteur.3324 | 0.9982 |
| Le cimétérol | 00,5-50 ng/mL | y = 0,2186x-0. Nous avons une différence.1270 | 0.9960 |
| Le salbutamol | 00,5-50 ng/mL | y = 0,0913x-0.0644 | 0.9973 |
| Terbutaline | 00,5-50 ng/mL | y est égal à 0,2788x-0.1353 | 0.9972 |
| Le tubulobutérol | 00,5-50 ng/mL | y est égal à 0,2699x-0.1041 | 0.9988 |
| Cimbutérol | 00,5-50 ng/mL | y est égal à 0,1025x-0.0255 | 0.9990 |
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Figure 2 Chromatogramme de courbe standard de sept β-agonistes
3.3 Limite de détection (LOD) et limite de quantité (LOQ)
Dans cette méthode, la limite de détection (LOD) et la limite de quantification (LOQ) des β-agonistes sont fixées à 0,2 ng/mL et 0,5 ng/mL, respectivement.le rapport signal-bruit aux concentrations spécifiées pour LOD et LOQ est supérieur à 3 et à 10, respectivement, répondant aux exigences de sensibilité expérimentale.
Tableau 4 Rapports signal/bruit correspondants pour la LOD et la LOQ de chaque composé
| Le composé. | Ratio signal/bruit (S/N) | |
| Département d'accueil | Le lieu de production | |
| Clenbutérol | 19.65 | 67.23 |
| Ractopamine | 61.88 | 114.61 |
| Le cimétérol | 16.34 | 61.02 |
| Le salbutamol | 34.22 | 90.29 |
| Terbutaline | 44.58 | 110.99 |
| Le tubulobutérol | 20.07 | 68.48 |
| Cimbutérol | 4.80 | 14.67 |
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Figure 3 Chromatogrammes ioniques de sept β-agonistes à concentration LOD et LOQ
3.4 Essai de précision
Une solution mixte de substances standard β-agonistes à faibles, moyennes et hautes concentrations a été prise et injectée six fois consécutives pour comparer le temps de rétention et les écarts de la zone de pic.Les résultats sont présentés dans le tableau ci-dessousTous les β-agonistes présentaient des écarts de temps de rétention inférieurs à 1% et des écarts de zone de pic inférieurs à 3%, répondant aux exigences expérimentales.
Tableau 5 Essai de précision pour chaque composé
|
Le composé. |
Concentration (ng/mL) |
Temps de rétention RSD (%, n=6) |
RSD de surface maximale (%, n=6) |
|---|---|---|---|
| Clenbutérol | 1 | 0.16 | 2.40 |
| 5 | 0.13 | 1.78 | |
| 20 | 0.00 | 2.32 | |
| Ractopamine | 1 | 0.21 | 2.14 |
| 5 | 0.15 | 2.72 | |
| 20 | 0.21 | 1.69 | |
| Le cimétérol | 1 | 0.20 | 1.92 |
| 5 | 0.11 | 2.55 | |
| 20 | 0.14 | 2.41 | |
| Le salbutamol | 1 | 0.17 | 1.37 |
| 5 | 0.23 | 1.66 | |
| 20 | 0.35 | 2.44 | |
| Terbutaline | 1 | 0.36 | 2.52 |
| 5 | 0.23 | 2.64 | |
| 20 | 0.36 | 1.36 | |
| Le tubulobutérol | 1 | 0.13 | 1.19 |
| 5 | 0.10 | 1.69 | |
| 20 | 0.10 | 1.70 | |
| Cimbutérol | 1 | 0.35 | 1.28 |
| 5 | 0.39 | 2.62 | |
| 20 | 0.38 | 1.65 |
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Fig. 4 Chromatogrammes de test de précision de sept β-agonistes (6 injections)
3.5 Essai par échantillonnage
Les échantillons de viande de porc achetés sur le marché ont été testés selon la méthode de prétraitement mentionnée et aucun β-agoniste n'a été détecté.Aucun pic chromatographique n'a été observé aux temps de rétention correspondant aux sept β-agonistes., tandis que les autres pics représentent les signaux de matrice après hydrolyse enzymatique.
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Figure 5 Chromatogramme d'essai de l'échantillon de porc
4Conclusion
Cette méthode utilise le système Wayeal LCMS-TQ9200 de chromatographie liquide-spectrométrie en tandem pour la détermination des β-agonistes dans le porc.Les données démontrent que tous les sommets chromatographiques présentent une bonne forme sans queue, la sensibilité répond aux exigences expérimentales, les coefficients de corrélation linéaires dépassent 0.99, et la précision est satisfaisante avec des écarts de temps de rétention inférieurs à 1% et des écarts de zone de pic inférieurs à 3% pour six injections consécutives de chaque composé.Aucun β-agoniste n'a été détecté dans les tests sur les échantillons de viande de porc.Ces résultats indiquent que la méthode, équipée du système Wayeal LC-MS/MS, remplit les exigences de détection qualitative et quantitative de routine pour les analystes cibles.
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